電泳儀于1937年研發，常用支持物體有濾紙、醋酸纖維薄膜等。電泳技術是分子生物學研究不可缺少的重要分析手段。電泳一般分為自由界面電泳和區帶電泳兩大類，自由界面電泳不需支持物，如等電聚焦電泳、等速電泳、密度梯度電泳及顯微電泳等，這類電泳目前已很少使用。

電泳儀原理：

區帶電泳則需用各種類型的物質作為支持物，常用的支持物有濾紙、醋酸纖維薄膜、非凝膠性支持物、凝膠性支持物及硅膠-G薄層等，分子生物學領域中最常用的是瓊脂糖凝膠電泳。所謂電泳，是指帶電粒子在電場中的運動，不同物質由于所帶電荷及分子量的不同，因此在電場中運動速度不同，根據這一特征，應用電泳法便可以對不同物質進行定性或定量分析，或將一定混合物進行組份分析或單個組份提取制備，這在臨床檢驗或實驗研究中具有極其重要的意義。電泳儀正是基于上述原理設計制造的。

使用方法：

1、首先用導線將電泳槽的兩個電極與電泳儀的直流輸出端聯接，注意極性不要接反。

2、電泳儀電源開關調至關的位置，電壓旋鈕轉到最小，根據工作需要選擇穩壓穩流方式及電壓電流范圍。

3、接通電源，緩緩旋轉電壓調節鈕直到達到的所需電壓為止，設定電泳終止時間，此時電泳即開始進行。

4、工作完畢后，應將各旋鈕、開關旋至零位或關閉狀態，并撥出電泳插頭。

注意事項：

1、電泳儀通電進入工作狀態后，禁止人體接觸電極、電泳物及其它可能帶電部分，也不能到電泳槽內取放東西，如需要應先斷電，以免觸電。同時要求儀器必須有良好接地端，以防漏電。

2、儀器通電后，不要臨時增加或撥除輸出導線插頭，以防短路現象發生，雖然儀器內部附設有保險絲，但短路現象仍有可能導致儀器損壞。

3、由于不同介質支持物的電阻值不同，電泳時所通過的電流量也不同，其泳動速度及泳至終點所需時間也不同，故不同介質支持物的電泳不要同時在同一電泳儀上進行。

4、在總電流不超過儀器額定電流時（最大電流范圍），可以多槽關聯使用，但要注意不能超載，否則容易影響儀器壽命。

5、某些特殊情況下需檢查儀器電泳輸入情況時，允許在穩壓狀態下空載開機，但在穩流狀態下必須先接好負載再開機，否則電壓表指針將大幅度跳動，容易造成不必要的人為機器損壞。

6、使用過程中發現異?，F象，如較大噪音、放電或異常氣味，須立即切斷電源，進行檢修，以免發生意外事故。

研發背景：

1937年，瑞典生化學家Tiselius集前人百余年探索電泳現象之大成，發明了Tiselius電泳儀，在此基礎上建立了研究蛋白質的自由界面電泳方法，利用該法首次證明人血清是由白蛋白（A）、α、β、γ球蛋白組成，并因此于1948年獲得阿果獎。隨后電泳技術的發展突飛猛進，1949年，RicketlsMarrack等人證明人血清蛋白質經電泳分離可依次分為白蛋白，α1、α2、β、γ球蛋白五個組分，1957年Reiner對人血清五個組分蛋白進行了定量分析。

但自由界面電泳沒有固定支持介質，擴散和對流作用較強，影響分離效果，于是在50年代相繼出現了固相支持介質電泳。最初的支持介質是濾紙和醋酸纖維素膜，目前這些介質在實驗室已經應用較少。在很長一段時間里，小分子物質如氨基酸、多肽、糖等通常用濾紙、纖維素或硅膠薄層平板作為介質進行電泳分離、分析，但目前一般使用靈敏度更高的技術如高效液相色譜法(HPLC)等來進行分析。而對于復雜的生物大分子，以濾紙、硅膠或醋酸纖維素膜等作為支持介質進行電泳，其分離效果并不理想。于是1959年，Raymond和Weintraub,Davis和Ornstein先后利用人工合成凝膠作支持介質建立了聚丙烯酰胺凝膠電泳，從而大大提高了電泳的分辨率和分離效果，增強了電泳技術的發展、滲透及與其他技術結合配套的能力。致使各式各樣的電泳技術和電泳材料如雨后春筍、競相爭榮，成為當代實驗科學技術中品種繁多、應用廣泛、基礎與尖端技術皆備的大技術。

根據電泳中是否使用支持介質分為自由電泳和區帶電泳。

自由電泳不使用支持介質，電泳在溶液中進行。這類電泳又分為非自由界面電泳和自由界面電泳兩類。非自由界面電泳指懸浮在溶液中的帶電粒子（如各種細胞）通電后全部移動，不出現界面，如顯微電泳等。自由界面電泳中被分離物質集中在某一層，形成各自的界面而進行定性或定量分析。自由界面電泳需要昂貴精密的電流儀器，僅在少數特殊電泳如等電聚焦電泳和等速電泳中使用。

區帶電泳都使用支持介質，根據支持介質不同分為濾紙電泳、醋纖膜電泳、薄層電泳和凝膠電泳等。此外，根據支持介質的裝置形式不同又可分為水平板式電泳、垂直板式電泳、垂直盤狀電泳、毛細管電脈、橋形電泳和連續流動電泳等。